справки и запись

8 (8412) 999-349

8 800 234-34-34

мы открыты для всех

г. Пенза, ул. Урицкого, 118
пн-пт: с 7 до 20 часов

Для слабовидящих

ПЦР-исследования

ПЦР, или полимеразная цепная реакция — вид лабораторного исследования, помогающего выявить в биоматериале пациента наличие внутренней структуры ДНК различных микроорганизмов, в частности возбудителей инфекции. Этот вид диагностики широко распространен благодаря своей точности, возможности работы с любым биоматериалом и высокой чувствительности.



Частые вопросы

1Какие инфекции диагностируют методом ПЦР?

ПЦР-исследование применимо для диагностики таких инфекций как:

  • хламидиоз;
  • трихомониаз;
  • гонорея;
  • уреаплазма;
  • микоплазма;
  • ВИЧ-инфекция;
  • герпес-вирусные инфекции (цитомегаловирус и герпес);
  • диагностика коронавирусной инфекции;
  • токсоплазмоз.

Также этот метод применяют и для идентификации условно-патогенной микрофлоры урогенитального тракта набором «Фемофлор-скрин», диагностики папилломавируса человека (ВПЧ-инфекции) набором «КВАНТ-15».

2Какие правила необходимо соблюдать при сборе материала на урогенитальный микробиоценоз методом ПЦР?

Для исследования женщин репродуктивного возраста на наличие ИППП рекомендуется взятие биоматериала (соскоб эпителиальных клеток) из цервикального канала, для исследования состояния урогенитального микробиоценоза — из заднебокового свода влагалища.

«ФЕМОФЛОР-СКРИН» предполагает объединение этих двух видов исследования в одном тесте. В связи с этим биоматериал рекомендуется забирать либо только из цервикального канала (учитывая, что микробная обсемененность цервикального канала в норме в 10 раз ниже, чем влагалища), либо помещать в одну пробирку биоматериал, полученный разными одноразовыми стерильными зондами из цервикального канала и заднебокового свода влагалища.

Рекомендуется брать материал из места предполагаемой локализации инфекционного процесса.

В день обследования женщины не должны проводить туалет половых органов и спринцевание влагалища.

В течение предшествующих 5-ти дней должны отсутствовать незащищенные половые контакты.

Необходимо, чтобы исследуемый клинический материал содержал возможно большее количество эпителиальных клеток и минимальное количество слизи и примеси крови. Неправильное взятие биоматериала может привести к невозможности получения достоверного результата и, вследствие этого, необходимости повторного взятия биоматериала.

Данная медицинская технология может применяться для оценки качественного и количественного состава микрофлоры любого происхождения в случае, если предполагаемый видовой состав соответствует перечню микроорганизмов, определяемых с помощью данной технологии.

Клинический материал берут в пробирку объемом 1,5 мл, содержащую в качестве транспортной среды 0,5 мл стерильного физиологического раствора (Проба РАПИД), которая забирается в лаборатории и хранится при 2–8°С.

3При каких клинических ситуациях сбор материала противопоказан?
  • ранее, чем через 24–48 часа после кольпоскопии;
  • ранее, чем через 24 часа после УЗИ-исследования с помощью влагалищного датчика;
  • ранее, чем через 2 недели после применения лекарственных препаратов (пробиотики, эубиотики), содержащих микроорганизмы;
  • на фоне менструального кровотечения;
  • ранее, чем через 10 дней после применения антибактериальных препаратов или местных антисептических средств;
  • на фоне применения гонадотропин-рилизинг-гормонов;
  • хирургическая кастрация;
  • лактационная аменорея.
4Какие существуют особенности взятия материала из влагалища?
  • клинический материал из влагалища получают с заднего или боковых сводов с помощью вагинального или уретрального зонда путем соскоба в поверхности эпителия;
  • материал должен быть получен ДО проведения мануального исследования;
  • перед манипуляцией гинекологическое зеркало можно смочить теплой водой, применение антисептиков для обработки зеркала противопоказано;
  • у девочек клинический материал получают со слизистой оболочки преддверия влагалища без использования гинекологического зеркала;
  • полученный материал помещают в пробирку с транспортной средой.
5Какие существуют особенности взятия материала из уретры?
  • клинический материал из уретры получают с помощью уретрального зонда;
  • у мужчин материал из уретры можно заменить первой утренней порцией мочи в количестве не менее 20–30 мл, отобранной в специальный сухой стерильный флакон на 50 мл;
  • перед взятием клинического материала пациентке рекомендуется воздержаться от мочеиспускания в течение 1,5 — 2 часов;
  • при наличии свободных уретральных выделений наружное отверстие уретры следует очистить с помощью ватного тампона, который можно смочить стерильным физраствором;
  • при наличии гнойных выделений соскоб рекомендуется брать через 15 — 20 минут после мочеиспускания;
  • при отсутствии свободных выделений может быть проведен легкий массаж уретры с помощью зонда для взятия биоматериала;
  • после введения инструмента в уретру на глубину 1 см необходимо продвигать его к наружному отверстию, слегка нажимая на заднюю и боковые стенки уретры (вращательные движения болезненны);
  • полученный материал помещают в пробирку с транспортной средой.
6Какие существуют особенности взятия материала из цервикального канала?
  • клинический материал цервикального канала получают после введения во влагалище гинекологического зеркала с помощью уретрального зонда;
  • перед взятием материала необходимо УДАЛИТЬ ватным тампоном СЛИЗЬ и затем тщательно обработать шейку матки стерильным физиологическим раствором;
  • после введения тампона (зонда) в шеечный канал на 1,5 см его вращают несколько раз и извлекают;
  • при извлечении зонда необходимо полностью исключить его касание стенок влагалища.

Запишитесь на прием

Заполняя настоящую форму, я подтверждаю свое согласие на обработку вносимых в нее моих персональных данных